CFImager 叶绿素荧光成像系统

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CF

Imager 叶绿素荧光成像系统

英国Technologica公司推出的叶绿素荧光快速成像系统Chlorophyll fluorescence Imager（CF Imager），汇集各类荧光成像仪的优点，是目前国际同类产品中成像面积***大，精度***高的一款荧光成像系统，是叶绿素荧光成像领域的领军产品。CF Imager可用于快速扫描、实时处理、分析叶绿素荧光各项参数及成像的研究。 CF Imager是英国科学家带领研究团队历经8年不断创新推出，目前已全面商业化。 CF Imager配有领先设计的光源和功能完备的专业分析软件，具有高可靠性。该系统设计已获多项专利，其充分满足了叶绿素荧光成像系统的需求，可获取***佳的成像效果。 CF Imager目前主要销往欧洲、北美、澳洲及日本，其卓越的性能和高度的可靠性受到广大科研工作者的充分首肯。详情请登陆www.ecotek.com.cn或www.technologica.co.uk 重要特征  确保PPFD > 6000 mol·m-1·s-1的脉宽调制（PWM）蓝光。  同类产品中成像面积***大，> 150cm2  16个独立光源阵列，可对96孔板或者异质性样品单独调试至***佳均匀照明。

超稳定的光源系统，确保测量区域内辐射差异小于±2%。

友好的操作界面，使用便捷，可根据试验需求编程进行自动分析；可选择多种图像操作工具和数据导出方式。

自动识别、分析96孔板上的个体群落，每分钟***快可扫描6块板，***多可对250个样品进行实时分析。

自动、实时计算每个样品的7个叶绿素荧光参数，可同时测定15个样品的荧光动力学曲线。

高性能 AVT Stingray 逐行扫描CCD，分辨率1400×1050，IEEE1394高速数据传输端口，配有Tamron高分辨率(Megapixel) 100l/mm镜头。

应用领域 * 整叶荧光成像，是光合作用机理研究的强大工具。 * 测定荧光诱导曲线、淬灭分析、快速光响应曲线。 * 叶片光合作用的异质性判断，并结合气孔不均匀关闭进行

深入分析。 * 检测叶片受环境胁迫的损伤程度。 * 遗传育种、突变株筛选的有效工具。 * 通过叶绿素荧光参数的变化考察施肥效应。 * 大批量测定植物、地衣、苔藓、微藻等样品

技术指标

光源:  蓝色 LED 470nm

(其它颜色可选),16 TSL100 屏

PWM-软件控制  预先校准和定准

饱和脉冲> 6000 mol·m-2·s-1，2000 mol·m-2·s-1***大连续活化光

整个测量区域内的辐射差异小于±2% 检测器：

预先校准AVT Stingray 2/3”逐行扫描CCD，高度可调±20 mm 成像区域：＞150 cm2 软件： Fluorimager 主机：

可折叠面板，自动散热装置

标准样品台：120 x 170 mm铝板带有96孔板

外形规格： 580 L x 450 W x 450 H mm  内部体积：0.085 m3

重量：24Kg 电源：电压 85-264

V AC，

频率 47-440 Hz 峰值电流 20A，工作电流 2-3A 安全性：CE认证

环境指标: 工作温度 0-40℃, 工作湿度 5-95% 非凝结，存贮温度 -40 -70℃  参考文献 1. Tracy

Lawson, et al..(2008).Reductions in mesophyll and guard cell photosynthesis

impact on the control of stomatal responses to light and CO2. Journal of

Experimental Botany, Vol. 59, No. 13, pp. 3609–3619. 2. James I.L. Morison, et

al..(2007).Lateral CO2 Diffusion inside Dicotyledonous Leaves Can Be

Substantial: Quantification in Different Light Intensities. Plant Physiology,

Vol. 145, pp. 680–690. 3. Tracy Lawson, James Morison.(2006).Visualising

patterns of CO2 diffusion in leaves. New Phytologis 169: 637–640. 4. James I.L.

Morison, et al.. (2005). Lateral Diffusion of CO2 in Leaves Is Not Sufficient

to Support Photosynthesis. Plant Physiology, September, Vol. 139, pp. 254–266,

5. Susanne von Caemmerer, et al..(2004).Stomatal conductance does not correlate

with photosynthetic capacity in transgenic tobacco with reduced amounts of

Rubisco. Journal of Experimental Botany, Vol. 55, pp. 1157-1166. 6. Tracy

Lawson, et al.. (2003). The responses of guard and mesophyll cell

photosynthesis to CO2, O2, light, and water stress in a range of species are

similar. Journal of Experimental Botany, Vol. 54, No. 388, pp. 1743-1752. 7.

Lawson, et al.. (2002). Response of photosynthetic electron transport in

stomatal guard cells and mesophyll cells in intact leaves to light, CO2 and

humidity. Plant Physiol 128: 1-11. 8. Leipner J, et al..(2001). Primary sites

of ozone-induced perturbations of photosynthesis in leaves: Identification and characterisation

in Phaseolus vulgaris using high resolution chlorophyll fluorescence imaging. J

Exp Bot, 52, 1-8.

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